Особенности инкубации cовременных кроссов мясной птицы

За последние десятилетия генетика и селекция в птицеводстве совершили огромный рывок вперед. Это привело к тому, что современные кроссы мясной птицы существенно отличаются от своих предшественников по темпам роста и развития. Однако, несмотря на то, что срок откорма птицы сократился в среднем с 80 до 40 дней, период инкубации яйца остался неизменным. Несмотря на это современные кроссы существенно отличаются от своих предшественников и по некоторым параметрам эмбрионального развития.

Это предполагает, что изменившаяся генетика заставляет иначе подойти как к технологии откорма птицы, так и коренным образом пересмотреть подход к инкубации яйца.

Очевидно, что в развитом птицеводческом мире эти процессы находились под постоянным контролем и сопровождались параллельным прогрессом в области инкубационных технологий и оборудования. По некоторым объективным причинам отечественное птицеводство было лишено возможности шагать в ногу со временем и пользоваться достижениями мировых лидеров в этой области. Тем не менее, мы уже многие годы активно пользуемся результатами зарубежной селекции. Ведущие мировые кроссы мясной птицы (Ross, Cobb, Hubbard и др) давно укоренились в отечественном птицеводстве. Мы неплохо научились работать с племенной птицей и бройлером, получая высокие производственные и экономические показатели. Однако вместе с генетикой мы получили и сложности, к которым наша отрасль не была готова.

Подавляющее большинство российских инкубаториев оснащены давно уже отслужившими свой срок инкубационными и выводными шкафами. Морально и физически устаревшее оборудование не отвечает требованиям, предъявляемым к современной технологии инкубации высокопродуктивных кроссов мясной птицы. Это неминуемо сказывается на результатах инкубации и, что крайне важно – на качестве суточных цыплят. А это определяет как результаты в первую неделю, так и финальные показатели откорма бройлеров.

Оборудование, спроектированное и произведенное несколько десятилетий назад, не спо­собно эффективно справляться с количеством тепла, выделяемого современными крос­сами мяс­ной птицы на стадии эмбрионального развития. Это особенно сильно проявляется там, где с переходом на новый кросс птицы не было внесено никаких корректировок в режим инкубации.

Табл. 1. Выработка метаболического тепла у современных яичных и мясных пород в сравнении с традиционной Голландской голубой породой (Mарлен Бурьян, Pas Reform Hatchery Technologies, NL)

День инкубации	Количество выделяемого тепла, W на 1000 яиц у мясных и яичных кур
	Росс 308	Росс 508	Белый леггорн	Голландская голубая
17	151,2	160,2	133,2	130,0
18	156,6	149,4	130,2	137,0
19	164,4	160,8	127,2	124,0
20	252,0	239,4	130,8	169,0

Из данных таблицы  видно, что генетически обусловленная интенсивность роста птицы определяет и интенсивность эмбрионального развития и как показатель – более высокую теплоотдачу в этот период. Поэтому любое несоответствие режима инкубации кроссу птицы, т.е. излишний обогрев, недостаточная вентиляция и охлаждение машины, может спровоцировать ситуацию, когда эмбрион испытывает перегрев со всеми вытекающими негативными последствиями: высокая поздняя эмбриональная смертность, плохая выводимость, низкая активность и жизнеспособность суточных цыплят, плохая одно­родность, начиная с первой недели откорма, отставание в росте и развитии всех внутренних систем и органов, повы­шенный отход в первые дни жизни, высокий расход корма и неудовлетворительный средне­суточный привес.

Табл. 2. Характерные показатели качественных и «дефектных» цыплят

Показатели нормального развития	Показатели "перегрева"
Длинный, хорошо развитый, с большими глазами и большим клювом	Поздняя смертность (задохлики, замершие)
С хорошо развитыми органы (печень, ж.к.т.)	Слабые, пассивные
Хорошо развитое оперение	Мелкие, бледные, плохо развитые
Маленький остаточный желточный мешок (до 6 г)	Несросшееся пупочное кольцо
Хорошо сросшееся пупочное кольцо, нет мембран	Кровь на и в скорлупе, омфалиты
Подвижный, активный	Полные животы, большой, плотный желточный мешок
Не уставший, не пытается садиться на ноги	Неправильное расположение головы (над крылом), перехлест клюва, акрания
	Покраснение на надклювье, на суставах

Развитие цыпленка — это сложный процесс, который можно упрощенно представить следующим образом: эмбрион в процессе построения своего организма утилизирует содержимое яйца. Для этого необходима энергия, содержащаяся в желтке. Для «сжигания» энергии необходим кислород, который поступает через скорлупу. В результате такого обмена образуются продукты метаболизма: СО₂, Вода и Энергия (тепло), которые должны быть удалены из яйца путем вентиляции, испарения и охлаждения. И все эти процессы контролируются определенной температурой.

Логично, что для оптимального процесса инкубации нам необходимо грамотно управлять температурой, вентиляцией и влажностью внутри машины. Кроме того, очень важен поворот яйца, но этот фактор в данном контексте не обсуждается.

Относительно температуры в современной инкубации существует 3 важней-ших понятия:

• Температура эмбриона (непосредственно внутри яйца).
• Температута яйца (поверхности скорлупы).
• Температура инкубации (режим работы инкубационной машины).

На протяжении долгих лет считалось, что определяющим для развития эмбриона является температура инкубации (воздуха внутри машины), и поэтому все инку-бационное оборудование было сконструировано именно по этому критерию. Однако реальную значимость имеет ощущаемая эмбрионом внутренняя температура яйца. Но поскольку измерение температуры эмбриона в процессе инкубации техниче-ски затруднительно, то для контроля чаще прибегают к показателю температуры по-верхности яйца.

Согласно рекомендациям производителей высококлассного инкубационного оборудования («HatchTech», «PasReform», «ChickMaster») для оптимального развития эмбриона температура яйца в процессе инкубации должна быть в следующих пределах:

Показатели Т указаны по шкале Фаренгейта (⁰F). Это позволяет более точно регистрировать отклонения от оптимума. При этом:

Негативный эффект от неоптимальных температур инкубации для цыплят очевиден и давно доказан в большом количестве экспериментов и на практике.

Табл 3. Результаты влияния разных режимов инкубации на показатели качества суточных цыплят (Lourens et al, Spelderholt, NL 2003)

Температурный режим по периодам	Вес теля без желчного мешка (г.)	Длина цыпленка (см)	Вывод (%)	ж.м. в 7 дней (г.)	Вес сердца (г)
Низ.Норм.Норм 98-100-100	37,1	19,0	78,9	147,7	0,33
Низ.Норм.Выс. 98-100-102	33,8	18,3	77,8	148,0	0,28
Норм.Норм.Норм. 100-100-100	37,9	19,4	84,7	154,6	0,36
Норм.Норм.Выс.	38,0	19,3	77,6	151,9	0,31

Не случайно в таблице указан весь цыпленка без остаточного желтка. Живой вес цыпленка не является показателем его качества, поскольку 2 цыпленка с одинаковой живой массой могут иметь совершенно разный объем желтка, свидетельствующий о разной степени  их развития.

Похожее исследование по влиянию недогрева и перегрева на финальные показатели откорма бройлеров проведено в Пенсильвании, США.

Табл 4. Влияние недогрева и перегрева в последний период инкубации на результаты откорма бройлеров (Gladys et al)

Т на 16-21 день (эмбрион)	Живая масса	Затраты комбикорма (при 2 кг)
99,5 (недогрев)	2,214	1,82
101,5 (оптимум)	2,263	1,75
103,5 (перегрев)	2,166	1,80

Производители оборудования, учитывая подобные негативные эффекты, дают свои рекомендации по режимам инкубации с учетом направления выращивания птицы.

Табл. 5. Установленные величины температуры, рекомендованные для инкубаирования пород коричневой несушки и бройлера (PasReform)

День инкубации	Возраст эмбриона, ч	Средняя температура на поверхности яйца		Установленная в инкубаторах температура
		оС	оF	Для яичных кур		Для мясных кур
				оC	оF	оC	оF
1	0	37,8	100,0	38,0	100,4	38,0	100,4
4	72	37,8	100,0	37,9	100,2	37,7	99,9
7	144	37,8	100,0	37,8	100,0	37,7	99,9
10	216	37,8	100,0	37,8	100,0	37,6	99,8
13	288	37,8	100,0	37,6	99,7	37,3	99,2
16	360	38,3	100,9	37,4	99,4	36,8	98,3
19	432	38,8	100,8	36,9	98,5	36,4	97,5

Однако сегодня необходимо учитывать не только предназначение инкубируемой птицы (мясная или яичная), но и к какому именно кроссу она относится. Так, при одинаковых режимах инкубации температура яйца кроссов «Смена», «Сибиряк» и «Баросс» будет ниже, чем у кроссов «Hubbard», «Ross» или «Cobb». Важно также учитывать калибр яйца и степень заполнения инкубационной машины.

>Кроме того, важнейший параметр — система охлаждения машины. При исправно работающей системе охлаждения зачастую определяющей является частота вращения вала двигателя – она зависит как от мощности мотора, так и от степени износа шкива! Если обобщить характеристики инкубационного оборудования, то можно подытожить, что комфортность эмбрионов внутри машины определяется тремя основными параметрами:

• Температура воздуха (режим инкубации);
• Скорость движения воздуха (система охлаждения);
• Однородность среды (конструкция шкафа и влажность);

Более того, ни для кого не секрет, что микроклимат в старых помещениях, где находится инкубационное оборудование, часто далек от оптимума. В такой ситуации на режим инкубации будет влиять и сезонность. Так летом очень часто в инкубационных залах температура намного выше рекомендованной, а зимой – наоборот.

К сожалению – это действительность, с которой еще многим отечественным птицефабрикам необходимо мириться. Однако это не означает, что ситуация безвыходная, и мы должны недополучать цыплят и терять на показателях откорма. Опустив технические недостатки оборудования, мы сконцентрируем внимание на технологических элементах, которыми можно и нужно управлять. Удивительно то, что до сих пор некоторые птицефабрики продолжают использовать недифференцированный режим инкубации от начала и до переноса яйца в выводные шкафы. Это предопределяет большое количество проблем, связанных с перегревом яйца. Для минимизации ущерба от неоптимальных режимов инкубации и улучшения качества суточных цыплят существует методика термометрии яйца, которая позво-ляет выявить критические периоды в развитии эмбриона и своевременно скорректи-ровать режим инкубации, приблизив его к оптимальным параметрам. В дорогостоящем современном инкубационном оборудовании имеются датчики, считывающие температуру поверхности яйца, и процесс терморегуляции осуществляется автоматически. В старых отечественных инкубаторах такая функция отсутствует, поэтому мы должны пользоваться ручным методом термометрии.

В 10-11 дневном возрасте эмбрион только начинает выделять тепло и перегрева, как правило, не наблюдается. Поэтому для контроля перегрева мы рекомендуем начинать термометрию с 14-го дня и вплоть до наклева яйца. Тем не менее, в первый период инкубации возможен «недогрев», который, как было показано в таблицах 2 и 3 также имеет негативное влияние на развитие цыплят. Поэтому для полноты картины можно проводить термометрию, начиная со второго дня инкубации. К сожалению, чем примитивнее оборудование, тем сильнее в нем выражена температурная зональность.

Диаграмма.1 Praktijkonderzoek Pluimveehouderij, Lelystad, NL. 99/1

Поэтому для исключения серьезной ошибки температуру яйца в шкафу необходимо измерять в трех зонах (верх, середина и низ), желательно во внешних и во внутренних лотках по 10-15 штук яйца с каждого. Таким образом, имея как минимум 30-45 измерений с одного шкафа, необходимо вычислить среднюю t по каждой зоне и только тогда, при необходимости, вносить корректировки в режим инкубации. На следующие сутки - снова делать аналогичные замеры и корректировать режим до отработки оптимальных значений. Процедура не требует много времени, но должна проводиться по описанной методике. Иначе, измеряя температуру лишь в 1-2 зонах, можно ошибиться с расчетом средней t и неверно скорректировать режим инкубации.

Табл. 6. Результаты термометрии в инкубационной машине ИУП Ф-45 на 16 сутки

Температура (oF) по разным зонам в машине	Верх	Середина	Низ
	102,9 102,5 101,4 102,2 102,2 102,6 102,0 101,7 101,6 100,9	102,0 102,2 102,0 102,1 101,7 101,8 103,3 102,3 101,0 100,1	101,6 102,0 101,8 102,1 100,9 101,6 101,7 100,3 101,7 101,6
Средняя температура по зонам	102,0	101,9	101,5

По результатам данной термометрии очевиден перегрев во всех зонах машины.

Методика термометрии

• Для максимальной эффективности термометрии перед началом процедуры термометр необходимо согреть в инкубаторе в течение 15 мин (если этого не сделать, возможна погрешность в измерениях). Если это вызывает какие-то затруднения, то аналогичного эффекта можно добиться, если до начала замеров носить его в одежде (близко к телу).
• Разместить инфракрасный термометр на поверхности скорлупы под воздушной камерой (измерения на воздушной камере дают погрешность в  0,5°F).
• Измерить температуру инфракрасным термометром, размещенным под углом 90° к поверхности скорлупы. Измерение под неправильным углом дает погрешность в 0,5-1,5°F.

Для этой процедуры подходит обычный инфракрасный ушной термометр «Brown thermoscan», который бывает в продаже в обычных аптеках и магазинах бытовой техники. Предпочтительнее, чтобы у него была шкала измерения как в ^oС, так и в ^oF.

Рис. 2.3. Методика измерения температуры яйца ИК термометром «Brown thermoscan»

Влажность при инкубации

В современной мировой практике известно несколько подходов в отношении относительной влажности (ОВ) в процессе инкубации. Этот параметр необходимо рассматривать в зависимости от нескольких факторов. Основной ориентир для регуляции влажности в инкубационной машине – это % «усушки» яйца. Он напрямую связан с относительной влажностью, температурным режимом и вентиляцией внутри машины. При переводе на вывод, потеря веса яйцом должна быть в пределах 12-13%. Процесс потери веса должен представлять собой приблизительно ровную линию. Поэтому до 18 дня инкубации потеря веса яйцом в сутки должна равняться 0,67-0,72% от его начального веса. Для отработки влажностного режима в инкубационной машине необходимо ежедневно в одно и то же время взвешивать заранее маркированный лоток и высчитывать % усушки яйца. При этом, естественно, удалять яйцо из этих лотков нельзя. Причиной большей потери веса яйца может быть дисбаланс – высокая температура при низкой влажности. В результате - плохая теплоотдача и перегрев эмбрионов. При усушке ниже нормы – наиболее вероятен недогрев яйца при высокой влажности (недостаточная вентиляция). Цыплята выводятся вялые, апатичные. Обратный показатель может указывать на слишком высокую температуру инкубации. Компания «PasReform», с учетом качества своего оборудования, рекомендует для своих инкубаториев придерживаться показателя ОВ в пределах 53% в период 1-18 день, 78% - при массовом наклеве, 60% - в конце вывода. При этом за основу режима инкубации берется измерении Т яйца и его усушка.

Специалисты компании «Aviagen» допускают, что при закладке яйца ОВ может быть порядка 30% в первые дни, от 45 до 60% до перевода, и значительно выше (80 % и более) после перевода и на выводе. Компания «Cobb-Vantress» рекомендует поддерживать ОВ на уровне 80% и выше от начала до конца инкубации.

Работа инкубационных машин регулируется в зависимости от внутренней температуры и влажности согласно стандартной шкале. Однако, в действительности, это приводит к большому разбросу яйца по температуре в различных участках шкафа. В жаркие дни, особенно при отсутствии систем кондиционирования воздуха в инкубационных залах, отечественные шкафы могут справиться с перегревом только при открытых дверцах, что приводит к избыточной потере влажности. При таком режиме увлажнители в шкафах начинают работать непрерывно. Это в свою очередь приводит к чрезмерному охлаждению отдельных участков машины – особенно вдоль задней стенки, и – к еще большей зональности климата внутри шкафа. Во избежание сильных перепадов ОВ, а также с целью ограничения работы штатных увлажнителей мы рекомендуем с первой недели устанавливать лотки с водой в передней части инкубационных машин, а также вдоль задней стенки выводных шкафов. Это позволит повысить и стабилизировать уровень ОВ внутри машины за счет постоянного пассивного испарения воды. Данный подход давно используется ведущими производителями инкубационного оборудования, а также применен в новых отечественных инкубаторах. Ситуацию с микроклиматом внутри машин можно существенно улучшить, обеспечив контролируемый микроклимат в инкубационном и выводном залах. Это поможет лучше поддерживать уровень влажности и t внутри машин и непременно скажется положительно на качестве выводимых цыплят.

Таким образом, для правильной настройки любых машин (как отечественных, так и зарубежных) с целью инкубации современных мясных кроссов птицы необходимо:

1. При текущем режиме инкубации провести мониторинг t яйца по приведенной ме-тодике с 12 до 20 дня инкубации.
2. Определить момент начала перегрева (Т>100,4 ^oF)
3. Начать постепенное (на 0,2–0,4^oC) снижение температуры воздуха (режима инкубации) за день до предполагаемого перегрева.
4. Продолжать мониторинг температуры яйца после каждого понижения.
5. Остановиться на температурном режиме, который не позволяет температуре яйца превышать 101 ^oF

В сочетании с использованием лотков с водой этот метод позволяет оптимизировать режим инкубации для наиболее физиологичного развития эмбрионов и получения качественных цыплят.

Важнейшие элементы, влияющие на качество суточных цыплят

«Окно вывода» характеризует дружность вывода цыплят и является показате-лем их однородности и качества. Для большинства видов оборудования и ситуаций период инкубации бройлерного яйца составляет 21 сутки + 6/10 часов = 510/514 ч. В некоторых случаях необходимо вводить поправки (см. ниже).

Суть проблемы заключается в том, что «окно вывода» цыплят зависит от очень многих факторов и к моменту посадки на птичник возраст цыплят чаще всего варьируется в пределах 16-40 часов, при этом около 50% цыплят – 25-31 час. Очевидно, что чем дольше цыплята после вывода остаются без воды и корма, тем хуже для их состояния и результатов выращивания. Оптимальные параметры «окна вывода» можно уложить в следующую схему:

Соблюдение некоторых правил позволяет сократить эти сроки, а также улучшить качество цыплят и повысить % вывода:

1. Яйцо от старого стада крупнее, чем от молодого. Выше его порозность, то есть выше потеря влаги. Мелкое же яйцо за счет большей площади скорлупы, относительно его объема, обладает большей теплоотдачей и поэтому выводится раньше крупного. Иногда разница доходит до 10 ч. Поэтому при совместной ин-кубации мелкое яйцо необходимо закладывать на несколько часов позже круп-ного из расчета: +30 минут инкубации на каждые 2,5 г веса яйца свыше 50 г.
2. Продолжительность хранения яйца. Необходимо помнить, что каждый день хранения яйца свыше 3 суток снижает выводимость на 0,7-1,0% и требует 1 дополнительного часа инкубации.

   Продолжительность хранения, дней	Температура, +oC	Относительная влажность, %	Расположение яйца
   0-3	18-21	75	Тупым концом вверх
   4-7	15-17	75	Тупым концом вверх
   8-10	12-14	80-88	Тупым концом вверх
   >10	10-12	80-88	Острым концом вверх: ре­комендуется поворачивать яйцо каждые 24 часа

   
   Однако, сегодня можно с уверенностью сказать, что существует достаточно эффективный метод снижения негативных последствий от длительного хранения яйца. Проведенные в Голландии исследования доказали, что предварительный про-грев инкубационного яйца в течение 3 или 6 часов при температуре 1000 (37,8^oC) позволяет повысить выводимость яйца (на 9-11%) путем снижения ранней и поздней эмбриональной смертности, которая является следствием длительного хранения (2 недели), а также снизить % слабых цыплят (S.Lourens, 2002).
3. Процедура подготовки яйца к инкубации зависит от сроков и условий его хранения. Рекомендуется прогревать яйцо до закладки в инкубационные шкафы в течение минимум 12 часов при Т= 21-24^oС.

   Срок хранения, дней	Предварительный прогрев
   0-7	12 часов при 20-22oC
   8-14	18 часов при 23-24oC

4. Грязное яйцо (с пола, с пометом) принято считать непригодным для инкубации. Высокая микробная обсемененность яйца с момента снесения приводит к повышенной микробной обсемененности эмбрионов, повышению % тумаков и в результате – плохому санитарному качеству суточных цыплят. В дальнейшем это обусловливает повышенный % падежа на первой неделе от омфалитов, а также учащение случаев артритов, НГБК и других проблем в старшем возрасте.
5. Всевозможные аэрозольные обработки цыплят после выборки и сортировки различными составами на наш взгляд – излишнее мероприятие, поскольку эффективность такой обработки минимальна, при этом удлиняется время пребывания цыплят в инкубатории после вывода. Вполне достаточно использования 40% раствора формалина в выводном шкафу при 10% наклеве цыплят и до выборки исходя из расчета: Объем раствора = 60 мл /м³, S зеркала = 50 см²/м³ выводного шкафа.
6. Вакцинацию ИБК методом крупнокапельного спрея необходимо, по возможности, делать в инкубатории. Это позволяет качественно и быстро провакцинировать цыплят и сэкономить время при посадке цыплят на птичник.
7. По причине изношенности выводных металлических лотков многие фабрики недополучают 2-3% вполне здоровых цыплят (травмы). Поэтому замена старых лотков на новые пластиковые - это одномоментное капиталовложение, которое окупается в течение 2-3 месяцев, одновременно повышая % вывода и снижая % травмированных цыплят.

Заключение

Мониторинг температуры эмбрионов (яйца) является лучшим индикатором ком-фортности условий их инкубации и развития. Именно он, в сочетании со своевременной корректировкой температуры инкубации и влажности, позволяет оптимизировать микроклимат в инкубаторах и выводных шкафах, повысить выводимость яйца, и что самое важное, существенно улучшить качество и однородность суточных цыплят – залог высоких производственных и эко-номических показателей.

Литература

1. Cobb hatchery management Guide.2002.
2. D.C.Deeming. Incubation od eggs from our modern strains of chicken.WP.18.3.2002.
3. J.Zoons, K.Baere. Incubation technique and post hatch performance. WP. 20.6.2007
4. Boerjan M. Maximizing chick uniformity, performance and vitality. WP. 20.8.2006
5. Boerjan M. Genetic progress inspires changes in incubator technology WP. 20.5.2003
6. Boerjan M. Chick quality and hatchability depend on incubation temperature
7. Boerjan M. Single stage incubation is the most natural choice. WP. 20.7.2004
8. Lourens S. Heating of hatching eggs before storage improves hatchability. WP.18.1.2002
9. Lourens S. The importance of air velocity in incubation. WP.17.3.2003.
10. Meijerhof R. Incubation Principles: what does the embryo expect from us? Aust.Poult.Sci.Symp. 2009
11. Meijerhof R. Ventilation of incubators, the secrets of carbon dioxide, humidity and finally temperature
12. Meijerhof R. The importance of temperature control in optimising chick health. WP.22.3.2006
13. Meijerhof R. Chick size matters.WP 22.5.2006
14. Meijerhof R. Incubation by embryo temperature. Hybro B.V.
15. Meijerhof R. Big eggs give big chicks, don’t they…Hybro B.V.
16. Ross Breeders. Broiler management Guide.1999
17. Sluis W. We have the future of hatchery technology at our fingertips 2004
18. Sluis W. Embryo temperature guideline for a quality hatch. WP 18.10.2002
19. Sluis W. Petersime turns the rules upside down for more viable chicks. WP.17.11.2001.
20. Sluis W. Embryos of high yield birds require better temperature control! WP.17.10.2001.